Дослідження впливу концентрації агарозного гелю та періоду культивування на біо- та механічні властивості інженерії тканин хондроцитів

Автор(и)

  • А.Дж. Джавад Університет Вавілону; Університет Королеви Марії у Лондоні

DOI:

https://doi.org/10.15330/pcss.22.4.767-774

Ключові слова:

Хондроцит, тканинна інженерія, агароза, біоматеріали, глікозаміноглікан

Анотація

Як гелевий каркас для інженерії тканин хондроцитів, концентрація агарози відіграє значну роль у взаємозв’язку між пористістю та живленням. У цій роботі досліджено вплив концентрації та періоду культивування на глікозаміноглікан (GAG) та механічні властивості. Хондроцити великої рогатої худоби виділялися в різних концентраціях агарозного гелю, приблизно 4% і 6%, протягом різного періоду культивування від 0 до 7 днів. Для вимірювання механічних властивостей і концентрації GAG у підготовлених зразках використовували метод механічного випробування (MTS) та спектрофотометричний метод з калібрувальною кривою. Результати механічних випробувань та вміст GAG показали, що у більшості зразків є широкий діапазон дисперсності, що пов’язано з різними факторами. Щодо механічних властивостей, ці фактори можна пояснити анізотропністю виробленого хондроцита з агарозними каркасами, недостатньою дисперсністю клітин у каркасі гелю під час висіву та культивування та деякими умовами процедури тестування, такими як гідратація збалансованого сольового розчину Ерла (EBSS). Хоча для результатів GAG цими факторами можуть бути відмінності середовища росту клітин між середовищами in vitro та in vivo. Однак, середнє значення максимального стресу зросло в 6% агарозі з 0,01331 Н/мм2 на 0 день до 0,01678 Н/мм2 на 7 день, оскільки збільшення концентрації GAG вказує на збільшення росту хондроцитів. Як правило, концентрація GAG також збільшується з 3,7 до 70 мкг/мл при 4% і з 6,4 до 55,4 при 6% агарозі протягом 0 і 7 днів культивування, відповідно. Рекомендований спосіб вирішити ці відмінності – використовувати біореактор, який може забезпечити більше відповідності між середовищами in vitro та in vivo.

Посилання

L. Kock, C. van Donkelaar, K. Ito, Tissue engineering of functional articular cartilage: the current status, Cell and tissue research 347(3), 613-627 (2012); https://doi.org/10.1007/s00441-011-1243-1.

I. El-Sherbiny, M. Yacoub, Hydrogel scaffolds for tissue engineering: Progress and challenges, Global Cardiology Science and Practice 1(3), 38 (2013); https://doi.org/10.5339/gcsp.2013.38.

M. Farokhi, F. Jonidi Shariatzadeh, A. Solouk, H. Mirzadeh, Alginate based scaffolds for cartilage tissue engineering: a review, International Journal of Polymeric Materials and Polymeric Biomaterials 69(4), 230-47 (2020); https://doi.org/10.1080/00914037.2018.1562924.

P. Abdollahiyan, F. Oroojalian, A. Mokhtarzadeh, M. de la Guardia, Hydrogel‐Based 3D Bioprinting for Bone and Cartilage Tissue Engineering, Biotechnology journal 15(12), 2000095 (2020); https://doi.org/10.1002/biot.202000095.

M. Salati,. J. Khazai, A. Tahmuri, A. Samadi,.A. Taghizadeh, M. Taghizadeh, P. Zarrintaj, J. Ramsey, S. Habibzadeh, F. Seidi, M. Saeb, Agarose-based biomaterials: opportunities and challenges in cartilage tissue engineering, Polymers 12(5), 1150 (2020); https://doi.org/10.3390/polym12051150.

M. Huber, S. Trattnig, F. Lintner, Anatomy, biochemistry, and physiology of articular cartilage, Investigative radiology 35(10), 573-80 (2000); https://doi.org/10.1097/00004424-200010000-00003.

D. Lee, D. Bader, Compressive strains at physiological frequencies influence the metabolism of chondrocytes seeded in agarose, Journal of orthopaedic research 15(2), 181-8 (1997); https://doi.org/10.1002/jor.1100150205.

J. Buckwalter, H. Mankin, Articular cartilage: tissue design and chondrocyte-matrix interactions, Instructional course lectures 47, 477-86 (1998).

J. Narayanan, J. Xiong, X. Liu, Determination of agarose gel pore size: Absorbance measurements vis a vis other techniques, InJournal of Physics: Conference Series 28(1), 017 2006; https://doi.org/10.1088/1742-6596/28/1/017.

G. Kazi, K. Rahman, M. Farahat, T. Matsumoto, Fabrication of single gel with different mechanical stiffness using three‐dimensional mold, Journal of Biomedical Materials Research Part A 107(1), 6-11 (2019); https://doi.org/10.1002/jbm.a.36455.

H. Tabani, S. Asadi, S. Nojavan, M. Parsa, Introduction of agarose gel as a green membrane in electromembrane extraction: an efficient procedure for the extraction of basic drugs with a wide range of polarities, Journal of Chromatography A 1497, 47-55, (2017); https://doi.org/10.1016/j.chroma.2017.03.075. Epub 2017 Mar 29.

S. Lien, L. Ko, T. Huang, Effect of pore size on ECM secretion and cell growth in gelatin scaffold for articular cartilage tissue engineering, Acta biomaterialia, 5(2):670-9 (2009); https://doi.org/10.1016/j.actbio.2008.09.020.

T. Chowdhury, D. Bader, J. Shelton, D. Lee, Temporal regulation of chondrocyte metabolism in agarose constructs subjected to dynamic compression, Archives of biochemistry and biophysics, 417(1), 105-11, (2003); https://doi.org/10.1016/s0003-9861(03)00340-0.

E. Darling, K. Athanasiou, Articular cartilage bioreactors and bioprocesses, Tissue engineering 9(1), 9-26 (2003); https://doi.org/10.1089/107632703762687492.

Y. Kim, R. Sah, A. Grodzinsky, A. Plaas, J. Sandy, Mechanical regulation of cartilage biosynthetic behavior: physical stimuli, Archives of biochemistry and biophysics 311(1), 1-2 (1994); https://doi.org/10.1006/abbi.1994.1201.

##submission.downloads##

Опубліковано

2021-12-30

Як цитувати

Джавад, А. (2021). Дослідження впливу концентрації агарозного гелю та періоду культивування на біо- та механічні властивості інженерії тканин хондроцитів. Фізика і хімія твердого тіла, 22(4), 767–774. https://doi.org/10.15330/pcss.22.4.767-774

Номер

Розділ

Технічні науки